دانشگاه شهید مدنی آذربایجان

 آمار

تعداد نشریات5
تعداد شماره‌ها108
تعداد مقالات1,228
تعداد مشاهده مقاله1,147,445
تعداد دریافت فایل اصل مقاله1,006,646
سلماسی, محمد, توفیقی, اصغر, عصری رضایی, سیامک, طلوعی آذر, جواد. (1402). تاثیر هشت هفته تمرین هوازی و مصرف مکمل روی بر مقادیر برخی هپتوکاین ها و آنزیم های کبدی موش های صحرایی نر ویستار آلوده شده با بیس فنول ـ A. , (), -. doi: 10.22049/jahssp.2023.28824.1572
محمد سلماسی; اصغر توفیقی; سیامک عصری رضایی; جواد طلوعی آذر. "تاثیر هشت هفته تمرین هوازی و مصرف مکمل روی بر مقادیر برخی هپتوکاین ها و آنزیم های کبدی موش های صحرایی نر ویستار آلوده شده با بیس فنول ـ A". , , , 1402, -. doi: 10.22049/jahssp.2023.28824.1572
سلماسی, محمد, توفیقی, اصغر, عصری رضایی, سیامک, طلوعی آذر, جواد. (1402). 'تاثیر هشت هفته تمرین هوازی و مصرف مکمل روی بر مقادیر برخی هپتوکاین ها و آنزیم های کبدی موش های صحرایی نر ویستار آلوده شده با بیس فنول ـ A', , (), pp. -. doi: 10.22049/jahssp.2023.28824.1572
سلماسی, محمد, توفیقی, اصغر, عصری رضایی, سیامک, طلوعی آذر, جواد. تاثیر هشت هفته تمرین هوازی و مصرف مکمل روی بر مقادیر برخی هپتوکاین ها و آنزیم های کبدی موش های صحرایی نر ویستار آلوده شده با بیس فنول ـ A. , 1402; (): -. doi: 10.22049/jahssp.2023.28824.1572

تاثیر هشت هفته تمرین هوازی و مصرف مکمل روی بر مقادیر برخی هپتوکاین ها و آنزیم های کبدی موش های صحرایی نر ویستار آلوده شده با بیس فنول ـ A

مطالعات کاربردی تندرستی در فیزیولوژی ورزش
مقالات آماده انتشار، پذیرفته شده، انتشار آنلاین از تاریخ 21 مهر 1402    اصل مقاله (1.08 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی Released under (CC BY-NC 4.0) license I Open Access I
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22049/jahssp.2023.28824.1572
نویسندگان
محمد سلماسی1؛ اصغر توفیقی1؛ سیامک عصری رضایی2؛ جواد طلوعی آذر* 1
1گروه فیزیولوژی ورزشی و حرکات اصلاحی، دانشکده علوم ورزشی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
2گروه کلینیکال پاتولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
چکیده
هدف: بیس­فنول­ـ­­A (BPA) مونومری است که در ساخت لایه رزینی محافظ در پلاستیک­های پلی­کربناته کاربرد دارد و بر سیستم اندوکرینی اثر منفی می­گذارد. هدف از پژوهش حاضر بررسی تاثیر هشت هفته تمرین هوازی با شدت متوسط و مکمل­یاری با نانوذره و ذره­نمکی اکسید روی بر فعالیت آنزیم­های کبدی و هپتوکاین­های منتخب (Fetuin-A و FGF-21) موش­های صحرایی نر ویستار آلوده شده با BPA بود. روش شناسی: مطالعه حاضر از نوع تجربی بود. 60 سر موش­ در 12 گروه 5 تایی: 1) کنترل، 2) BPA، 3) تمرین هوازی، 4) تمرین هوازی+BPA، 5) نانوذره، 6) نانوذره+BPA، 7) ذره نمکی اکسید روی، 8) ذره نمکی اکسید روی+BPA، 9) تمرین+ نانوذره، 10) تمرین+ نانوذره+BPA، 11) تمرین+ذره نمکی اکسید روی و 12) تمرین+ذره نمکی اکسید روی+BPA قرار گرفتند. تمرین هوازی به مدت هشت هفته، هر هفته پنج جلسه با شدت 50 الی 75 درصد VO2max و به مدت 25ـ64 دقیقه اجرا شد. مکمل­ نمکی و نانو (mg/kg 3)، پنج روز در هفته به مدت هشت هفته تزریق شد. مقادیر ALT، AST، Fetuin-A و FGF-21 با روش الایزا سنجش شد. از آزمون تحلیل واریانس یک­طرفه برای مقایسه بین گروهی و جهت تعیین اختلاف در گروه­ها از آزمون تعقیبی توکی استفاده شد. یافته‌ها: BPA باعث افزایش معنی­دار فعالیت ALT، AST و افزایش Fetuin-A کبدی نسبت به گروه کنترل شد (001/0=p)، اما تاثیری بر مقادیر کبدی FGF-21 نداشت ( 05/0p>). از طرفی، مکمل به تنهایی و ترکیب مکمل با تمرین منجر به کاهش معنی­دار فعالیت ALT و AST شد (001/0=p). تمرین به تنهایی، مکمل به تنهایی و ترکیب آن­ها نیز منجر به کاهش معنی­دار Fetuin-A شد (001/0=p). نتیجه‌گیری: تمرین هوازی، مکمل­­یاری با روی و به­ویژه ترکیب این دو (تمرین هوازی + مکمل­یاری با روی) احتمالاً بتواند آثار منفی القاء شده با BPA را کاهش دهد.
کلیدواژه‌ها
بیسفنول A؛ تمرین ورزشی؛ فاکتور رشد فیبروبلاستی 21؛ فتوئین A
مراجع
  1. Meng Z, Tian S, Yan J, Jia M, Yan S, Li R, et al. Effects of perinatal exposure to BPA, BPF and BPAF on liver function in male mouse offspring involving in oxidative damage and metabolic disorder. Environmental Pollution. 2019.
  2. Rochester JR, Bolden AL. Bisphenol S and F: a systematic review and comparison of the hormonal activity of bisphenol A substitutes. Environmental health perspectives. 2015;123(7):643-50.
  3. Wei J, Lin Y, Li Y, Ying C, Chen J, Song L, et al. Perinatal exposure to bisphenol A at reference dose predisposes offspring to metabolic syndrome in adult rats on a high-fat diet. Endocrinology. 2011;152(8):3049-61.
  4. Hwang S, Lim JE, Choi Y, Jee SH. Bisphenol A exposure and type 2 diabetes mellitus risk: a meta-analysis. BMC endocrine disorders. 2018;18(1):81.
  5. Alonso-Magdalena P, Morimoto S, Ripoll C, Fuentes E, Nadal A. The estrogenic effect of bisphenol A disrupts pancreatic beta-cell function in vivo and induces insulin resistance. Environ Health Perspect. 2006;114(1):106-12.
  6. Chitra KC, Rao KR, Mathur PP. Effect of bisphenol A and co-administration of bisphenol A and vitamin C on epididymis of adult rats: a histological and biochemical study. Asian journal of andrology. 2003;5(3):203-8.
  7. Andersen HM. Effects of plastic additives on precision cut liver slices (PCLS) from Atlantic cod (Gadus morhua): Norwegian University of Life Sciences, Ås; 2019.
  8. Harley KG, Aguilar Schall R, Chevrier J, Tyler K, Aguirre H, Bradman A, et al. Prenatal and postnatal bisphenol A exposure and body mass index in childhood in the CHAMACOS cohort. Environmental health perspectives. 2013;121(4):514-20.
  9. Serdar B, LeBlanc WG, Norris JM, Dickinson LM. Potential effects of polychlorinated biphenyls (PCBs) and selected organochlorine pesticides (OCPs) on immune cells and blood biochemistry measures: a cross-sectional assessment of the NHANES 2003-2004 data. Environmental health : a global access science source. 2014;13:114.
  10. Hassan ZK, Elobeid MA, Virk P, Omer SA, ElAmin M, Daghestani MH, et al. Bisphenol A induces hepatotoxicity through oxidative stress in rat model. Oxidative medicine and cellular longevity. 2012;2012:194829.
  11. Stefan N, Haring HU. The role of hepatokines in metabolism. Nature reviews Endocrinology. 2013;9(3):144-52.
  12. Mori K, Emoto M, Inaba M. Fetuin-A and the cardiovascular system. Advances in clinical chemistry. 2012;56:175-95.
  13. Dogru T, Genc H, Tapan S, Aslan F, Ercin CN, Ors F, et al. Plasma fetuin-A is associated with endothelial dysfunction and subclinical atherosclerosis in subjects with nonalcoholic fatty liver disease. Clinical endocrinology. 2013;78(5):712-7.
  14. Roos M, Oikonomou D, von Eynatten M, Luppa PB, Heemann U, Lutz J, et al. Associations of fetuin-A levels with vascular disease in type 2 diabetes patients with early diabetic nephropathy. Cardiovascular diabetology. 2010;9:48.
  15. Mathews ST, Singh GP, Ranalletta M, Cintron VJ, Qiang X, Goustin AS, et al. Improved insulin sensitivity and resistance to weight gain in mice null for the Ahsg gene. Diabetes. 2002;51(8):2450-8.
  16. Habibi Maleki A, Tofighi A, Ghaderi Pakdel F, Tolouei Azar J, Ehsani far M. The Effect of Three Different Exercise training on Blood Lipid Profile, Fetuin-A, and Fibroblast Growth Factor 21 (FGF-21) in Visceral Adipose Tissue of Obese Rats. Jundishapur Scientific Medical Journal. 2020;19(1):109-22. [In Persian]
  17. Heinrichsdorff J, Olefsky JM. Fetuin-A: the missing link in lipid-induced inflammation. Nature medicine. 2012;18(8):1182-3.
  18. Ramírez-Vélez R, García-Hermoso A, Hackney AC, Izquierdo M. Effects of exercise training on Fetuin-a in obese, type 2 diabetes and cardiovascular disease in adults and elderly: a systematic review and Meta-analysis. Lipids Health Dis. 2019;18(1):23.
  19. Malin SK, Mulya A, Fealy CE, Haus JM, Pagadala MR, Scelsi AR, et al. Fetuin-A is linked to improved glucose tolerance after short-term exercise training in nonalcoholic fatty liver disease. Journal of applied physiology (Bethesda, Md : 1985). 2013;115(7):988-94.
  20. Malin SK, del Rincon JP, Huang H, Kirwan JP. Exercise-induced lowering of fetuin-A may increase hepatic insulin sensitivity. Medicine and science in sports and exercise. 2014;46(11):2085-90.
  21. Dushay J, Chui PC, Gopalakrishnan GS, Varela-Rey M, Crawley M, Fisher FM, et al. Increased fibroblast growth factor 21 in obesity and nonalcoholic fatty liver disease. Gastroenterology. 2010;139(2):456-63.
  22. Ehsani far M, Habibi Maleki A, Tofighi A, Khadem Ansari M. Studies in Medical Sciences. 2019;30(6):487-501. [In Persian]
  23. Lin X, Liu YB, Hu H. Metabolic role of fibroblast growth factor 21 in liver, adipose and nervous system tissues. Biomed Rep. 2017;6(5):495-502.
  24. Patel R, Bookout AL, Magomedova L, Owen BM, Consiglio GP, Shimizu M, et al. Glucocorticoids regulate the metabolic hormone FGF21 in a feed-forward loop. Molecular endocrinology (Baltimore, Md). 2015;29(2):213-23.
  25. Khalafi M, Alamdari KA, Symonds ME, Nobari H, Carlos-Vivas J. Impact of acute exercise on immediate and following early post-exercise FGF-21 concentration in adults: systematic review and meta-analysis. Hormones. 2021;20(1):23-33.
  26. Camporez JP, Asrih M, Zhang D, Kahn M, Samuel VT, Jurczak MJ, et al. Hepatic insulin resistance and increased hepatic glucose production in mice lacking Fgf21. The Journal of endocrinology. 2015;226(3):207-17.
  27. Falamarzi K, Malekpour M, Tafti MF, Azarpira N, Behboodi M, Zarei M. The role of FGF21 and its analogs on liver associated diseases. Front Med (Lausanne). 2022;9:967375.
  28. Kharitonenkov A, Adams AC. Inventing new medicines: The FGF21 story. Molecular metabolism. 2014;3(3):221-9.
  29. Loyd C, Magrisso IJ, Haas M, Balusu S, Krishna R, Itoh N, et al. Fibroblast growth factor 21 is required for beneficial effects of exercise during chronic high-fat feeding. Journal of applied physiology (Bethesda, Md : 1985). 2016;121(3):687-98.
  30. Shabkhiz F, Khalafi M, Rosenkranz S, Karimi P, Moghadami K. Resistance training attenuates circulating FGF-21 and myostatin and improves insulin resistance in elderly men with and without type 2 diabetes mellitus: A randomised controlled clinical trial. European journal of sport science. 2021;21(4):636-45.
  31. Tofighi A, Alizadeh R, Tolouei Azar J. The effect of eight weeks high intensity interval raining (HIIT) on serum amounts of FGF21 and irisin in sedentary obese women. The Journal of Urmia University of Medical Sciences. 2017;28(7):453-66. [In Persian]
  32. Kim KH, Kim SH, Min YK, Yang HM, Lee JB, Lee MS. Acute exercise induces FGF21 expression in mice and in healthy humans. PloS one. 2013;8(5):e63517.
  33. Khalafi M, Habibi Maleki A, Sakhaei MH, Rosenkranz SK, Pourvaghar MJ, Ehsanifar M, et al. The effects of exercise training on body composition in postmenopausal women: a systematic review and meta-analysis. Frontiers in Endocrinology. 2023;14:1183765.
  34. Sunderman FW, Jr. The influence of zinc on apoptosis. Annals of clinical and laboratory science. 1995;25(2):134-42.
  35. Kumar SD, Vijaya M, Samy RP, Dheen ST, Ren M, Watt F, et al. Zinc supplementation prevents cardiomyocyte apoptosis and congenital heart defects in embryos of diabetic mice. Free Radical Biology and Medicine. 2012;53(8):1595-606.
  36. Brandão-Neto J, Silva CAB, Rezende AA, Almeida MG, Sales VSP, Marchini JúS. Zinc pharmacokinetics in insulin-dependent diabetes mellitus patients after oral zinc tolerance test. Nutrition Research. 2003;23(2):141-50.
  37. Hu HL, Chen RD, Ma LH. Protective effect of zinc on liver injury induced by D-galactosamine in rats. Biological trace element research. 1992;34(1):27-33.
  38. Handy RD, von der Kammer F, Lead JR, Hassellov M, Owen R, Crane M. The ecotoxicology and chemistry of manufactured nanoparticles. Ecotoxicology (London, England). 2008;17(4):287-314.
  39. Council NR. Nutrient requirements of poultry: 1994: National Academies Press; 1994.
  40. Nazarizadeh A, Asri-Rezaei S. Comparative Study of Antidiabetic Activity and Oxidative Stress Induced by Zinc Oxide Nanoparticles and Zinc Sulfate in Diabetic Rats. AAPS PharmSciTech. 2015;DOI: 10.1208/s12249-015-0405-y.
  41. Asri-Rezaei S, Tamaddonfard E, Ghasemsoltani-Momtaz B, Erfanparast A, Gholamalipour S. Effects of crocin and zinc chloride on blood levels of zinc and metabolic and oxidative parameters in streptozotocin-induced diabetic rats. Avicenna journal of phytomedicine. 2015;5(5):403.
  42. Habibi Maleki A, Tofighi A, Ghaderi Pakdel F, Tolouei Azar J. The effect of 12 weeks of high intensity interval training and high intensity continuous training on vegf, pedf and pai-1 levels of visceral and subcutaneous adipose tissues in rats fed with high fat diet. Sport Physiology & Management Investigations. 2020;12(1):101-20. [In Persian]
  43. Koch LG, Meredith TA, Fraker TD, Metting PJ, Britton SL. Heritability of treadmill running endurance in rats. The American journal of physiology. 1998;275(5):R1455-60.
  44. Salmasi M, Tofighi A, Asri S, Tolouei Azar J. Response of Liver Tissue Oxidative Indices to Bisphenol-A intoxicated Rats to Eight Weeks of Aerobic Training with and without Zinc Supplementation (Zinc Nanoparticles and Nanoparticles). Metabolism and Exercise. 2022;12(2). [In Persian]
  45. Azar JT, Maleki AH, Moshari S, Razi M. The effect of different types of exercise training on diet-induced obesity in rats, cross-talk between cell cycle proteins and apoptosis in testis. Gene. 2020;754:144850.
  46. Kim D, Yoo ER, Li AA, Cholankeril G, Tighe SP, Kim W, et al. Elevated Urinary Bisphenol A Levels are Associated with Nonalcoholic Fatty Liver Disease among Adults in the United States. Liver International. 2019.
  47. Mahdavinia M, Alizadeh S, Dehghani MA, Alipour M, Shahmohammadi HA, Rafiei Asl S. Effects of quercetin on bisphenol A-induced mitochondrial toxicity in rat liver. Iranian Journal of Basic Medical Sciences. 2019;22(5):499-505. [In Persian]
  48. Mourad IM, Khadrawy YA. The sensetivity of liver, kidney andtestis of rats to oxidative stress induced by different doses of bisphenol A. Life. 2012;50:19.
  49. Mathuria N, Verma RJ. Ameliorative effect of curcumin on aflatoxin-induced toxicity in serum of mice. Acta poloniae pharmaceutica. 2008;65(3):339-43.
  50. Ehsani FM, Habibi MA, Tofighi A, Khadem AMH, Tolouei AJ. Evaluation Of Hepatokine And Liver Enzymes Changes In Obese Rats With The High-Fat Diet To Different Training Modalities: An Experimental Study. 2019. [In Persian]
  51. Fortson WC, Tedesco FJ, Starnes EC, Shaw CT. Marked elevation of serum transaminase activity associated with extrahepatic biliary tract disease. Journal of clinical gastroenterology. 1985;7(6):502-5.
  52. Jenkins NT, McKenzie JA, Hagberg JM, Witkowski S. Plasma fetuin-A concentrations in young and older high- and low-active men. Metabolism: clinical and experimental. 2011;60(2):265-71.
  53. Lee S, Norheim F, Gulseth HL, Langleite TM, Kolnes KJ, Tangen DS, et al. Interaction between plasma fetuin-A and free fatty acids predicts changes in insulin sensitivity in response to long-term exercise. Physiological reports. 2017;5(5).
  54. Alisi A, Ceccarelli S, Panera N, Prono F, Petrini S, De Stefanis C, et al. Association between serum atypical fibroblast growth factors 21 and 19 and pediatric nonalcoholic fatty liver disease. PloS one. 2013;8(6):e67160.
  55. Tanaka N, Takahashi S, Zhang Y, Krausz KW, Smith PB, Patterson AD, et al. Role of fibroblast growth factor 21 in the early stage of NASH induced by methionine-and choline-deficient diet. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Basis of Disease. 2015;1852(7):1242-52.
  56. Giannini C, Feldstein AE, Santoro N, Kim G, Kursawe R, Pierpont B, et al. Circulating levels of FGF-21 in obese youth: associations with liver fat content and markers of liver damage. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2013;98(7):2993-3000.
  57. Fisher FM, Chui PC, Nasser IA, Popov Y, Cunniff JC, Lundasen T, et al. Fibroblast growth factor 21 limits lipotoxicity by promoting hepatic fatty acid activation in mice on methionine and choline-deficient diets. Gastroenterology. 2014;147(5):1073-83.e6.
  58. Fletcher JA, Meers GM, Laughlin MH, Ibdah JA, Thyfault JP, Rector RS. Modulating fibroblast growth factor 21 in hyperphagic OLETF rats with daily exercise and caloric restriction. Applied physiology, nutrition, and metabolism = Physiologie appliquee, nutrition et metabolisme. 2012;37(6):1054-62.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 318
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 180


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب